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The regulation gene expression of carbohydrate and mechanism


张晓宏综述 孙长颢审校哈尔滨医科大学公共卫生学院;营养与食品卫生教研室,哈尔滨 150086

  摄入过多的碳水化合物,可使人体易患肥胖症等疾病,而碳水化合物对许多参与葡萄糖和脂肪代谢的酶基因(见表1)表达的调控,是过量摄入碳水化合物引发肥胖等疾病的分子基础。
  迄今为止,碳水化合物对大多数酶基因表达的调控发生在转录水平。LPK和S14是目前研究得最为清楚的碳水化合物调控基因。



1 基因的结构和功能
1.1 肝脏型-丙酮酸激酶基因的结构和功能
  丙酮酸激酶(Lpyruvate kinase,LPK)催化磷酸烯醇式丙酮酸转变成丙酮酸,产生ATP,是葡萄糖酵解途径中的3个关键酶之一。
  哺乳动物组织中丙酮酸激酶有4个同工酶:分别为L、R、M1、M2型,均由4个相同的分子量约60kD的亚基构成。L型主要见于肝脏、肾上腺皮质,小肠亦含少量; R型仅存于红细胞中。M1型见于骨骼肌、心脏、脑组织;M2型见于胚胎组织、大多数成熟组织(尤其是白细胞)和各种肿瘤组织。1987年Tani等成功地克隆并确定了人LPK基因的序列,发现LPK基因由12个外显子、11个内含子组成,长约9.3kb。其cDNA长1629bp,编码543个氨基酸残基,5’端非翻译区长68bp,3’端非翻译区长度为743bp。
1.2 S14基因的结构和功能
  人类的S14(Spot 14)基因位于11号染色体q13.5~q14.1之间2。上游800bp,下游2.6kb,含有一个438bp的开放读码框,编码形成146个氨基酸3。S14基因编码形成的S14蛋白是一种较小的酸性含硫蛋白。分子量约为17kD,等电点为4.9。第95~114位氨基酸的二级结构为兼性α螺旋,使S14蛋白呈酸性。
  S14在脂肪的合成中发挥重要作用,原因在于:①S14蛋白仅在肝脏、白色脂肪组织、褐色脂肪组织、乳腺等生成脂肪的组织中含量丰富(在肝脏中,S14蛋白主要位于肝细胞核内);②对S14的调节与对脂肪合成的调节相近。如S14mRNA可因T3处理和进食碳水化合物饮食而升高,被儿茶酚胺、胰高血糖素降低;而脂肪从头合成也可因T3处理、进食碳水化合物饮食而升高,被儿茶酚胺、胰高血糖素而降低;③给予T3后,S14基因表达远早于其他脂质生成酶基因(如苹果酸酶)的表达。

2 碳水化合物对基因表达的调控
2.1 不同类型碳水化合物调节基因表达的特点
  与果糖相比,葡萄糖对LPK基因的转录激活呈现一种滞后现象。这与果糖在体内代谢的关键酶-果糖激酶的活化不依赖于胰岛素,葡萄糖代谢关键酶-葡萄糖激酶依赖于胰岛素,而血浆胰岛素水平在进食葡萄糖后12h才达最高峰有关。可见,不同类型碳水化合物调节相同基因表达的机制不同,有的是直接调节基因表达如果糖,有的是依赖于胰岛素的间接调节如葡萄糖。
2.2 激素在碳水化合物调节基因表达中的作用
  胰岛素和胰高血糖素是参与碳水化合物调控基因表达的主要激素。
  胰岛素在碳水化合物调控脂质生成酶基因表达中起重要作用。给予胰岛素可增加转录因子——固醇调节元件结合蛋白1c的表达,后者可结合到S14基因的启动子区(-139~-131)调控其转录。而胰岛素在碳水化合物刺激LPK基因表达中只起辅助作用。一方面,果糖不需要胰岛素即可克服cAMP介导的胰高血糖素的抑制作用,诱导肝脏LPK基因表达。另一方面,仅有胰岛素不足以诱导正常动物肝脏LPK基因表达,尚需其他转录因子的参与。
  胰高血糖素通过第二信使cAMP激活蛋白激酶A,磷酸化碳水化合物反应元件结合蛋白等转录因子和显著降低mRNA的稳定性,抑制葡萄糖分解和脂肪合成酶基因的转录。
2.3 碳水化合物反应元件
  基因中参与介导对碳水化合物反应的DNA序列称为碳水化合物反应元件(carbohydrate response element ChoRE)4。
  目前已知,LPK的关键调节区域位于启动子
(-96~+12)上游-172~-124bp,而S14的关键调节序列位于转录起始点上游-1457~-1428bp。LPK基因的关键调节序列中的-168~-145bp区域为ChoRE,-144~-126bp为辅助因子结合位点5。S14 基因关键调节序列中的-1448~-1422bp 区域为 ChoRE, -1448~-1467bp为辅助因子结合位点6。转录因子结合到碳水化合物反应元件和邻近的辅助位点介导完整的基因对葡萄糖反应。比较LPK、S14基因的ChoRE,人们发现一些共性:即ChoRE由两个间隔5bp的CANNTG形式的Ebox或Ebox样序列构成。每个Ebox中的头4个碱基和间隔的序列长度对于基因对葡萄糖的反应至关重要7。


2.4 参与碳水化合物调节基因表达的转录因子
  结合到LPK 、S14基因E-box上的转录因子主要是碱性的螺旋-环-螺旋/亮氨酸拉链basic helixloophelixleucine zipper bHLHZIP转录因子家族,它们均含有一个富含赖氨酸和精氨酸的碱性结构域和两个通过一个环状结构相连的兼性α螺旋,这些结构域参与该转录因子与DNA的结合和转录因子之间的相互作用。
1上游刺激因子
  上游刺激因子(upstream stimulation factorUSF)是bHLHZIP转录因子家族的一员,该蛋白有两种,分别为USF1(Mr43)、USF2(Mr44),二者具有相同的DNA结合特性,只是氨基端结构域有所不同。研究发现,肝癌细胞中USF蛋白过度表达,通过葡萄糖反应元件引起LPK表达;USF2杂合缺失的小鼠LPK、S14等基因对葡萄糖的反应异常8。这使人们一直认为,USF与ChoRE的结合对于碳水化合物诱导基因表达是必需的。直至近年来,研究人员才逐渐发现,USF与ChoRE的结合并不足以解释葡萄糖对基因转录的诱导9。因为,许多基因虽然含有可与USF结合的Ebox,但其表达不受葡萄糖的调节。
  2鸡卵白蛋白上游启动子-转录因子Ⅱ
  鸡卵白蛋白上游启动子-转录因子Ⅱ(chicken ovalbumin upstream promotortranscription factorⅡ COUPTFⅡ)是固醇甲状腺激素受体超家族中的一个孤儿受体。USF与COUPTFⅡ的DNA结合位点相重叠。COUPTFⅡ过表达可抑制USF依赖的LPK基因启动子的激活,抑制葡萄糖对LPK的转录诱导作用10。
  3固醇调节元件结合蛋白
  固醇调节元件结合蛋白(sterol regulation element binding proteinSREBP)也是bHLHZIP转录因子家族的一员,于1993年被首次发现。哺乳动物SREBP有三种 SREBP1a、SREBP1c、SREBP2,分别由SREBP1、SREBP2基因编码形成。SREBP1的初级转录产物在不同的位点被剪接形成SREBP1a、SREBP 1c。
  目前研究较多、功能较明确的是SREBP1c11,主要参与葡萄糖和胰岛素对脂质生成酶基因表达的调节(如图1)。胰岛素和葡萄糖可增加SREBP的转录活性12,后者结合到基因的固醇调节元件(sterol regulation elementSRE)上调节包括S14在内的脂质生成酶基因表达;另外,由于葡萄糖激酶基因的转录受胰岛素SREBP1c调控SREBP1c在葡萄糖调节LPK中也起一定作用。


  4碳水化合物反应元件结合蛋白
  2001年Uyeda K等从大鼠肝脏纯化和克隆出一个转录因子,因其可特异性地与LPK基因启动子的ChRE结合,故而将其命名为碳水化合物反应元件结合蛋白(carbohydrate response element binding protein ChREBP)。
   ChREBP(Mr=94600)位于细胞质中,是bHLHZIP转录因子家族的一员,有4个功能区:核定位信号(nuclear location signalNSL)区、富含脯氨酸的区域、螺旋-环-螺旋亮氨酸拉链区和拉链样区域。ChREBP的活化受磷酸化和去磷酸化调节。它有4个磷酸化位点,分别为P1、P2、P3、P4如图216。P1和P3位点可被cAMP依赖的蛋白激酶A(禁食时,胰岛素/胰高血糖素低,蛋白激酶A被胰高血糖素cAMP激活)磷酸化,P4可被AMP激活的蛋白激酶(在高脂肪饮食下被AMP激活)磷酸化。


   邻近NSL区有一个共有序列磷酸化位点193RRSS196P1。当动物进食高碳水化合物饮食时,NSL介导ChREBP的活化,使其转位至细胞核。蛋白激酶A磷酸化Ser196则可使NSL位点受到抑制,进而抑制ChREBP的核转位。
   ChREBP的碱性区域可与ChRE的Ebox结合,其中的Arg664、Asn668、Glu671可以与DNA的半个位点5’CAC3’3’GTG5’结合。Thr666位于其间,是蛋白激酶A的磷酸化位点(P3)。cAMP通过蛋白激酶A磷酸化Thr666,引入带负电荷的磷酸基团,打破Arg664与活性位点Glu671之间的盐桥, 在Thr666 和Arg664之间形成新的盐桥,使ChREBP的DNA结合能力丧失。
   葡萄糖的主要作用是活化磷酸化酶,拮抗蛋白激酶A和cAMP的作用,使ChREBP转位至细胞核,并增加其DNA结合活性。而进食高脂肪饮食时,AMPATP比值增加,激活AMP依赖的蛋白激酶(AMPK),后者磷酸化ChREBP的Ser568(P4),抑制ChREBP的DNA结合能力,进而抑制基因转录。这一点与胰高血糖素与胰岛素/葡萄糖在LPK和生脂酶基因表达上的相互拮抗作用相类似。

2.5 葡萄糖诱导基因表达的基本过程
   摄取高碳水化合物饮食后,后者在胃肠道经消化酶作用分解成葡萄糖并被吸收入血。葡萄糖由特异的葡萄糖转运子介导,被转运至组织细胞内。到目前为止,在哺乳动物组织中已经确定出15个分别由不同基因编码的葡萄糖转运子蛋白。其中,高米氏常数的葡萄糖转运子2可不依赖于胰岛素,介导肝脏、胰岛β细胞的葡萄糖摄取;在脂肪和骨骼肌细胞中,胰岛素刺激葡萄糖转运子4嵌入细胞膜中,将葡萄糖入摄取细胞内。与此同时,由于摄取高碳水化合物饮食诱导胰岛β细胞释放胰岛素,胰岛素使SREBP1c表达增高。
   葡萄糖进入细胞后产生的代谢产物是葡萄糖调节基因表达的基础14。葡萄糖在细胞内经分解代谢转变为6磷酸-葡萄糖,后者进入葡萄糖代谢的非氧化分支,在磷酸己糖异构酶的催化下,转变为6磷酸果糖,继而在转酮酶作用下,转变为5磷酸-木酮糖。5磷酸-木酮糖15作为代谢信号可以激活蛋白丝氨酸/苏氨酸磷酸酶2A(PP2A,存在于细胞质和细胞核中),促使细胞质内无活性的ChREBP的P1位点去磷酸化,使后者转位进入细胞核。在细胞核内,5磷酸木酮糖激活蛋白磷酸化酶2A,使ChREBP的P3位点去磷酸化,形成有活性的ChREBP,后者结合到LPK基因的ChRE上,诱导基因转录(如图3)16。其中,碳水化合物对S14等生脂酶基因的转录激活作用,还需要SREBP1c结合到基因的固醇调节元件上,(如图1)乃至包括上游刺激因子在内的其他转录因子的参与共同完成对基因转录的调控。当葡萄糖水平降低(如禁食等)时,细胞核内的ChREBP的P3位点被cAMP激活的蛋白激酶A磷酸化,由细胞核转移至细胞质,然后其P1位点进一步被cAMP激活的蛋白激酶A磷酸化,使其完全丧失转录活化作用,中止对基因转录的诱导。

3 碳水化合物调节基因表达的实际意义
  长期过量摄入高碳水化合物膳食,不仅刺激LPK等糖酵解途径中的关键酶基因的表达,使肝脏细胞葡萄糖分解代谢增加,为内源性脂肪生成提供原料;而且能够直接诱导S14等脂质生成酶基因的表达,从而增加内源性脂肪合成,使机体内蓄积的脂肪过多,引发肥胖进而诱发糖尿病等疾病。  所以,为防止高碳水化合物膳食引起的上述危害,一方面需要降低碳水化合物的摄入;另一方面,可通过干扰葡萄糖刺激LPK和S14等基因表达途径中的一些重要环节,如可利用特异性的葡萄糖激酶抑制剂、碳水化合物反应元件结合蛋白等转录因子抑制剂抑制基因表达,从而降低脂肪合成。相反,如果LPK活性过低,影响了脂肪的正常合成,可应用针对上述途径相应的激动剂来刺激LPK基因表达。


  对碳水化合物调节基因表达的分子机制的认识,在生物制药业有一定的应用前景。为科研人员利用基因工程技术获得相关的目的基因产物提供了一个新途径。如可将LPK或S14基因的启动子区与报告基因结合,形成重组体转染细胞。并以碳水化合物作为干预因素,借助碳水化合物对LPK或S14基因启动子的调控作用,诱导目标基因表达,从而获得相应的目的基因表达产物。

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